食物过敏并不只是“吃错东西”这么简单。作为一种慢性免疫系统疾病,它会反复影响患者的日常饮食和生活质量,严重时甚至可能危及生命。当前,临床上常用西替利嗪、氯雷他定等抗组胺药来缓解瘙痒、荨麻疹等过敏症状,但这类治疗更多是“压住症状”,长期使用可能面临疗效下降、嗜睡、口干等问题。因此,寻找更温和、多靶点的天然活性成分,正在成为食物过敏干预研究中的一个重要方向。


藻蓝蛋白(phycocyanin,PC)是一种天然色素蛋白,具有抗炎、抗氧化及抗肿瘤等生物活性。已有研究提示,PC 及其相关活性成分在抑制 IgE 介导的肥大细胞脱颗粒方面具有一定潜力,有望用于过敏反应干预。然而,PC 本身属于蛋白类物质,经口摄入后很容易受到胃酸和肠道蛋白酶的破坏,导致活性损失、生物利用度降低。换句话说,它不是没有用,而是很难“安全抵达”真正需要发挥作用的肠道部位。


围绕这一问题,青岛农业大学食品科学与工程学院吕良涛副教授团队在国际权威期刊《Chemical Engineering Journal》上发表了题为“Phycocyanin-sodium alginate microcapsules alleviate ovalbumin-induced food allergy by regulating purine metabolism in immune cells”的研究论文。该研究借助微流控技术,将藻蓝蛋白包埋进海藻酸钠微胶囊中,构建出一种具有“胃部保护、肠道释放”特点的 SA-PC 微胶囊递送体系。

 


 

本文要点:

1. 研究背景与目的

  • 临床挑战:食物过敏是一种常见的慢性过敏性疾病,该病易反复发作,重者危及生命,传统药物存在疗效下降及副作用。藻蓝蛋白(PC)虽具抗过敏潜力,但在胃部极易降解,导致生物利用度低。

  • 技术核心:研究利用微流控技术构建了肠道靶向递送系统,旨在通过包埋技术保护 PC 活性并实现肠道靶向释放,以探究其缓解过敏的深层机制。

2. SA-PC 微囊的制备与特性

  • 高效包埋参数:微流控平台制备出的微囊具有高度单分散性;当 PC 浓度为 4%、海藻酸钠浓度为 2% 时,包封率达到最大值(5%),载药率为 25.3%。

  • 物理形态特征

  • 微囊呈褶皱球形,干态平均直径约 80 μm,水化溶胀后约 124 μm。

  • 这种独特的褶皱表面结构有助于延长微囊在胃肠道中的停留时间,提升递送效率。

    • 理化稳定性

  • 结构确认:光谱分析证实 PC 成功包埋于海藻酸钠形成的致密氢键网络中。

  • 热稳定性显著增强:微囊化使 PC 的热变性峰消失,起始分解温度从 247 ℃ 提升至 258 ℃。

3. 肠道靶向释放行为

  • 胃部保护:微囊在模拟胃液中 2 小时的累计释放率 < 0.1%,表现出极佳的抗酸保护性能。

  • 肠道靶向释放:进入肠道环境后,微囊通过聚合物溶蚀与溶胀引发 Case-II 型传输机制实现 PC 释放(n = 1.2),确保了在小肠部位的靶向递送。

4. 系统性缓解食物过敏的效果

  • 症状与效应阶段抑制:在 OVA 诱导的小鼠模型中,SA-PC 显著降低了过敏评分(缓解抓挠和呼吸急促),并能稳定肥大细胞,显著降低血清中组胺mMCP-1的水平。

  • 免疫平衡重塑:成功纠正了 Th1/Th2 免疫失衡,表现为降低 Th2 指标(IgE、IgG1、IL-4、IL-13)并提高 Th1 指标(IgG2a、IFN-γ)。

5. 肠道屏障保护与微生态调节

  • 物理屏障修复:SA-PC 显著恢复了空肠中紧密连接蛋白(ZO-1、Occludin)和粘蛋白(Muc2)的表达与分布,增强了肠道完整性。

  • 菌群结构重塑

  • 增加了菌群丰度与多样性。

  • 显著富集了有益菌如阿克曼氏菌(Akkermansia),并提高乳杆菌属(Lactobacillus)丰度,同时抑制了葡萄球菌(Staphylococcus)等菌群特征。

6. 代谢机制与核心结论

  • 代谢通路调控:代谢组学证实 SA-PC 主要调节核苷酸代谢通路(包括嘌呤和嘧啶代谢)。

  • 关键代谢标志物:显著降低了反映细胞损伤和免疫激活的标志物——假尿苷(pseudouridine)和脱氧肌苷(deoxyinosine)的水平。

  • 核心机制:研究揭示了 SA-PC 通过调节“肠道菌群-核苷酸代谢-免疫稳态”轴发挥抗过敏作用的潜在机制,为开发针对食物过敏的营养干预产品或功能食品提供了理论依据。

 

 

 

海藻酸钠-藻蓝蛋白(SA-PC)微胶囊主要利用微流控技术(Microfluidics)通过内部凝胶化法制备而成。具体的制备过程及关键参数如下:

1. 溶液配制

制备过程涉及三个主要的液相:

  • 分散相(内相):将海藻酸钠(SA)溶液与 400 mM 的 Ca-EDTA溶液按 1:1 的比例混合,随后将纯化的藻蓝蛋白(PC)重新悬浮在该混合液中。

  • 连续相(油相):由石蜡油和 5% 的表面活性剂 SP-80 组成。

  • 收集相:由石蜡油、5% 的 SP-80 以及 5% 的乙酸组成。

2. 微流控制备流程

  • 液滴形成:利用微流控芯片(通道尺寸为 200 μm)精确控制流体行为。将分散相和连续相分别泵入芯片,分散相液滴在连续相的剪切下形成均匀的液滴。

  • 成胶机制(内部凝胶化):形成的液滴进入收集相。收集相中的乙酸会渗透进入液滴,触发 Ca-EDTA 释放出钙离子(Ca2+。释放出的钙离子迅速与海藻酸钠发生交联反应,形成坚固的凝胶网格,从而将藻蓝蛋白包裹在内部。

3. 优化参数与结果

研究通过实验确定了最佳的制备条件:

  • 流速比:分散相与连续相的流速比固定为 5:2

  • 最佳浓度:藻蓝蛋白浓度为 4%海藻酸钠浓度为 2%时,微胶囊性能最优。

  • 包埋效果:在此条件下,封装效率(EE)高达 5%,载药率(DL)为 25.3%。

这种利用微流控技术制备的微囊具有高度的单分散性(粒径分布均匀,CV 仅为 9.5%),克服了传统方法制备出的微囊粒径不均、包封率低以及高剪切力导致活性物质失活的问题。

 

 

图1. 海藻酸钠-藻蓝蛋白微胶囊的制备及其特征与形貌表征。(A) 不同海藻酸钠浓度和 (B) 不同藻蓝蛋白浓度对微胶囊包封率的影响。(C) SA、PC 和 SA-PC 的紫外-可见吸收光谱,(D) 荧光发射光谱,(E) Zeta 电位和 (F) 傅里叶变换红外光谱(FTIR)。(G) PC 的扫描电镜(SEM)图像(左图标尺 = 50 μm;右图标尺 = 10 μm)。(H) SA-PC 微胶囊的 SEM 图像(左图标尺 = 100 μm;右图标尺 = 40 μm)。(I) SA-PC(左)和空白微胶囊(右)的光学显微镜图像,标尺 = 100 μm。所有实验均进行三次重复(n = 3 次独立实验)。

 

 

图2. SA-PC 微胶囊的稳定性评价。SA-PC 微胶囊对 (A) pH、(B) 温度、(C) 光照的稳定性;(D) 在模拟胃肠液中的释放曲线。(E) 藻蓝蛋白微胶囊在不同时间点降解的显微图像(标尺 = 50 μm)。(F) PC、SA 空白微胶囊和 SA-PC 的差示扫描量热法(DSC)、(G) 热重分析(TGA)和 (H) 微商热重法(DTG)曲线。所有实验均进行三次重复(n = 3 次独立实验)。

 

 

图3. (A) 食物过敏小鼠模型的实验设计。(B) 小鼠过敏症状评分;小鼠血清和脾脏细胞因子水平:IgG (C)、IgE (D)、IgG1 (E)、IgG2a (F)、mMCP-1 (G)、组胺 (H)、IL-4 (I)、IL-13 (J) 和 IFN-γ (K)。结果以平均值 ± 标准差表示(每组 n = 6)。(****) p ≤ 0.0001, (***) p ≤ 0.001, (**) p ≤ 0.01, 以及 (*) p ≤ 0.05。

 

 

图4. 海藻酸钠、藻蓝蛋白和 SA-PC 微胶囊处理后,OVA 致敏小鼠空肠组织的代表性图像:(A) 苏木精-伊红(H&E)染色(上排 100×,标尺 = 200 μm;下排 200×,标尺 = 100 μm)和 (B) 免疫荧光染色,标尺 = 100 μm。(C) Muc2、(D) ZO-1 和 (E) Occludin 蛋白表达的定量分析。数据以平均值 ± 标准误表示(每组 n = 3)。*p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001。

 

 

图5. SA-PC 微胶囊对 OVA 诱导的小鼠肠道微生物群的影响。不同组间肠道菌群 OTU 的 (A) 维恩图(Venn plots)及 ASV 数量;(B) 基于 Chao1、Shannon 和 Simpson 指数的 Alpha 多样性;(C) 基于 Bray-Curtis 距离的主坐标分析(PCoA);在 (D) 门水平、(E) 属水平和 (F) 种水平上的肠道菌群丰度;(G) 进化分支图(LDA 得分 > 2);(H) 微生物群的 LDA 得分条形图(LDA 得分 > 2)。所有微生物群分析每组 n = 3。(****) p ≤ 0.0001, (***) p ≤ 0.001, (**) p ≤ 0.01, 以及 (*) p ≤ 0.05。

 

 

图6. SA-PC 微胶囊对 OVA 致敏小鼠肠道代谢物的影响。(A) 小鼠肠道代谢物总样品的 PCA 分析;(B) 对照组 vs OVA 组、(C) SA-PC 组 vs OVA 组以及 (D) 药物组 vs OVA 组小鼠肠道代谢物差异的火山图;(E) 对照组 vs OVA 组、(F) SA-PC 组 vs OVA 组肠道代谢物差异的火山图,以及 (G) 药物组 vs OVA 组小鼠肠道代谢物差异的匹配图。所有组别:每组 n = 6。

 

 

图7. SA-PC 微胶囊处理后 OVA 致敏小鼠肠道代谢通路的变化。(A) 对照组 vs OVA 组、(B) SA-PC 组 vs OVA 组以及 (C) 药物组 vs OVA 组的 KEGG 通路富集分析(n = 6)。

 

 

图8. 差异微生物群与代谢物的 Spearman 相关性分析。该分析使用了图 5 和图 6 的数据(微生物群 n = 3;代谢组学 n = 6)。

 

论文链接:https://doi.org/10.1016/j.cej.2026.176887

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